MF0377_3: Procesado citológico y tisular

Procesado citológico y tisular.

MF0377_3.

Módulo de formación MF0377_3: Procesado citológico y tisular.

Realizar el procesamiento integral y los complementarios del material biológico para su estudio por el patólogo.

210 horas.

C1: Analizar las características de las muestras biópsicas, necrópsicas y citológicas para su registro, codificado y distribución a las unidades correspondientes siguiendo protocolos y cumpliendo la normativa aplicable.

• CE1.1 Precisar los criterios de validación en la recepción de las muestras biópsicas y citológicas.
• CE1.2 Explicar los criterios de distribución de las muestras a las diferentes áreas del laboratorio de patología y citología (áreas de histopatología, inmunohistoquímica y microscopía electrónica).
• CE1.3 Describir la documentación que debe acompañar a las muestras, determinando el sistema de codificación en patología y citología.
• CE1.4 En un supuesto práctico de recepción de muestras en un laboratorio de anatomía patológica:
  • – Adjudicar cada muestra al área del laboratorio al que debe enviarse, rellenando la correspondiente hoja de trabajo.
  • – Asignar un código numérico o alfabético a la muestra.
  • – Preparar la documentación que debe acompañar a la muestra.
  • – Distribuir las muestras y la documentación adjunta a las distintas áreas.

C2: Analizar los procesos de tallado previos a la fijación de muestras histológicas, en función de cada tipo de muestra.

• CE2.1 Describir los distintos tipos de muestras histológicas y explicar las técnicas que deben realizarse en cada caso.
• CE2.2 Explicar el proceso de tallado que debe realizarse en cada tipo de muestra.
• CE2.3 Describir las características macroscópicas que pueden aparecer en las distintas muestras indicando cómo influye en el proceso de tallado y orientación de la pieza.
• CE2.4 En un supuesto práctico de realización de tallado de una muestra de tejido con unos protocolos establecidos:
  • – Realizar la descripción macroscópica de la muestra.
  • – Indicar si precisa alguna técnica previa a la fijación.
  • – Cumplimentar la hoja de petición correspondiente en caso de derivarse a otro laboratorio o área.
  • – Cumplimentar la hoja de trabajo establecida.

C3: Realizar el procesamiento de las muestras para la obtención de bloques (de parafina, por congelación de piezas quirúrgicas) en función de cada tipo de muestra, y de la solicitud correspondiente, cumpliendo la normativa aplicable.

• CE3.1 Relacionar los fijadores específicos para histología explicando sus técnicas de preparación, indicaciones según el tipo de muestra y métodos de conservación.
• CE3.2 Explicar las técnicas de inclusión en histología y la obtención de bloques para distintos fines diagnósticos.
• CE3.3 En un supuesto práctico de inclusión en parafina de una muestra de tejido determinado:
  • – Seleccionar los medios y reactivos necesarios para la fijación de la muestras histológicas en función de cada tipo de tejido.
  • – Preparar el inclusor, rellenando los líquidos que lo precisen.
  • – Realizar los bloques de parafina, orientando la pieza del modo requerido para su corte.
  • – Realizar el control de calidad del bloque.

C4: Analizar los procedimientos para la obtención de cortes histológicos de tejidos, precisando las técnicas de corte necesarias en función del tipo de bloque y el protocolo a realizar.

• CE4.1 Explicar la técnica de desbastado de «bloques» de parafina, describiendo los criterios de realización de la misma.
• CE4.2 Describir los distintos tipos de micrótomos (de rotación, de deslizamiento en parafina, plásticos y para huesos o tejidos calcificados, criomicrotomos y microtomos de congelación), sus indicaciones e instrucciones de uso.
• CE4.3 Detallar las técnicas de corte con los diferentes micrótomos.
• CE4.4 En un supuesto práctico de corte histológico de tejidos en un laboratorio de anatomía patológica:
  • – Seleccionar el micrótomo adecuado para cada bloque y tejido.
  • – Preparar el micrótomo seleccionado, orientar la muestra y montar las cuchillas.
  • – Preparar los baños de flotación y las placas para extensión de cortes.
  • – Desbastar el bloque y enfriarlo para su posterior corte.
  • – Realizar cortes con el grosor indicado, respetando la integridad de la superficie a estudiar.
  • – Recoger los cortes, extenderlos sobre un portaobjetos y orientarlos en la posición requerida para su estudio por el patólogo.

C5: Analizar las reacciones (químicas, enzimáticas, inmunológicas, entre otras) que conforman el proceso de tinción de cortes de tejidos, determinando las operaciones previas y posteriores requeridas que permitan obtener preparaciones aptas para su estudio por el patólogo.

• CE5.1 Relacionar los diferentes solventes utilizados para desparafinar los cortes.
• CE5.2 Explicar la técnica de rehidratación de las preparaciones.
• CE5.3 Describir el fundamento teórico, los diferentes tipos de reactivos utilizados el proceso técnico y las características de las imágenes obtenidas en las técnicas básicas de tinción de tejidos, histoquímicas y microbiológicas.
• CE5.4 Diferenciar los criterios de calidad en las distintas técnicas de tinción.
• CE5.5 En un supuesto práctico de tinción de tejidos con unos protocolos establecidos:
  • – Seleccionar los disolventes y reactivos necesarios para realizar la técnica indicada.
  • – Realizar la tinción.
  • – Aclarar y montar correctamente las preparaciones.
  • – Comprobar en el microscopio la calidad de la tinción.

C6: Aplicar los procesos de ultramicroscopía para el estudio ultraestructural de muestras de tejidos según protocolos y cumpliendo la normativa aplicable.

• CE6.1 Explicar los fundamentos de la microscopía electrónica y las principales partes de un microscopio electrónico de transmisión.
• CE6.2 Describir los procedimientos de fijación-inclusión-tinción/contraste requeridos para la observación de muestras en el microscopio electrónico de transmisión.
• CE6.3 Definir corte semifino y ultrafino, señalando sus diferencias y aplicaciones.
• CE6.4 En un supuesto práctico de cribado de cortes semifinos para su corte para estudio ultraestructural:
  • – Señalar los aspectos de la preparación que indican la presencia/ausencia de autolisis.
  • – Indicar si existen artefactos atribuibles al procesamiento de la muestra.
  • – Identificar los tipos celulares que se observan en la muestra.
  • – Clasificar la muestra como válida o no-válida para su corte y posterior estudio ultraestructural.

C7: Aplicar los protocolos de registro y archivo de resultados, bloques y preparaciones histológicas establecidos en un laboratorio de anatomía patológica, cumpliendo la normativa aplicable.

• CE7.1 Citar los sistemas de archivo de bloques que se pueden emplear en un laboratorio de anatomía patológica, indicando las ventajas y desventajas de cada uno de ellos.
• CE7.2 Citar los sistemas de archivo de preparaciones histológicas que se pueden emplear en un laboratorio de anatomía patológica, indicando las ventajas y desventajas de cada uno de ellos.
• CE7.3 Describir los datos que se deben incluir en las hojas de trabajo del laboratorio.
• CE7.4 Definir el mapa de riesgos de un paciente y los datos que deben incluirse.
• CE7.5 En un supuesto práctico de archivo de preparaciones histológicas en un laboratorio de anatomía patológica:
  • – Revisar la hoja de resultados de una muestra y su registro.
  • – Buscar una preparación concreta solicitada por el patólogo.
  • – Archivar en su ubicación correspondiente una preparación determinada.

Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajo:

C1 respecto a CE1.4; C2 respecto a CE2.4; C3 respecto a CE3.3; C4 respecto a CE4.4; C5 respecto a CE5.5; C6 respecto a CE6.4; C7 respecto a CE7.5.

Otras capacidades:

• Mantener el área de trabajo con el grado apropiado de orden y limpieza.
• Demostrar creatividad en el desarrollo del trabajo que realiza.
• Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.
• Proponer alternativas con el objetivo de mejorar resultados.
• Emplear tiempo y esfuerzo en ampliar conocimientos e información complementaria para utilizarlos en su trabajo.
• Aprender nuevos conceptos o procedimientos y aprovechar eficazmente la formación utilizando los conocimientos adquiridos.

1. El laboratorio de patología y citología

• Funciones, áreas, organización del trabajo, material y equipos.
• Documentos específicos del laboratorio de patología y citología (clínicos, de registro, de trabajo, estadísticos), cumplimentación, custodia y normativa aplicable al respecto.
• Recepción, registro y clasificación de muestras.
• Riesgos en el laboratorio de patología y citología.
• Normas de prevención de riesgos en el laboratorio.
• Accidentes y pautas de actuación.
• Gestión de residuos.

2. Procesamiento de muestras para su estudio histológico

• Materiales, reactivos y equipos en histotecnología y citotecnología.
• Uso eficiente de recursos.
• Macroscopía de las muestras.
• Proceso de fijación tisular.
• Descalcificación y reblandecimiento tisular.
• Artefactos.
• Tallado de las muestras.
• Registro y conservación de muestras.

3. Realización de bloques de tejidos

• Proceso de inclusión de muestras para microscopía óptica y electrónica.
• Preparación y confección de bloques.
• Orientación de la muestra.
• Equipos y materiales de inclusión histológica de tejidos: preparación, programación, limpieza y mantenimiento.
• Otras técnicas de procesamiento y estudio histocitológico.

4. Técnicas de corte

• Tipos de microtomos y componentes.
• Preparación de equipo.
• Orientación del bloque y ángulo de la cuchilla.
• Técnica de corte según el micro tomo y la composición del bloque.
• Problemática asociada a la sección de especímenes y resolución.
• Extensión y montaje de la muestra.
• Normas de seguridad específicas.

5. Técnicas de tinción

• Mecanismo general de coloración.
• Coloraciones histológicas de conjunto.
• Valoración de resultados.
• Técnicas de coloración no histoquímicas para la identificación de sustancias.
• Tinciones para la visualización de microorganismos.
• Contraste en microscopía electrónica.
• Técnicas de tinción histoquímica: PAS, plata metenamina, azul Alcián, hidrato de hierro coloidal de Hale, tinciones para pigmentos, entre otras.

6. Estudio microscópico

• Metódica del estudio microscópico.
• Tipos de microscopio.
• Microscopio óptico.
• Microscopio electrónico.
• Otros microscopios.
• Mantenimiento.
• Artefactos técnicos que impiden o dificultan el diagnóstico.

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