Preparaciones histológicas y citológicas de muestras forenses
MF1735_3.
Módulo de formación MF1735_3: Preparaciones histológicas y citológicas de muestras forenses.
Realizar preparaciones histológicas y citológicas de muestras forenses.
120 horas.
C1: Especificar tipos de muestras que llegan al laboratorio de patología indicando su recogida y procesamiento inicial.
- CE1.1 Explicar la estructura de un laboratorio de patología utilizando un organigrama e indicando las áreas y sus funciones.
- CE1.2 Describir características macroscópicas de piezas necrópsicas diferenciando los hallazgos patológicos de los normales.
- CE1.3 Indicar métodos de preparación, identificación y registro de extensiones a partir de sangre u otros fluidos orgánicos conforme a protocolos.
- CE1.4 Explicar el procesamiento de piezas necrópsicas desde su identificación hasta su inclusión en medios específicos, según protocolos.
- CE1.5 Explicar el procesamiento de muestras citológicas procedentes de vestigios biológicos, tales como sangre, otros fluidos biológicos, contenidos líquidos de órganos u otros, desde su identificación hasta su visualización en cámaras de recuento u otro procesamiento, según protocolos.
- CE1.6 Explicar las técnicas de: centrifugación, decantación y homogeinización, indicando los materiales y equipos utilizados.
- CE1.7 En un supuesto práctico de procesamiento inicial de bloques de piezas necrópsicas y otros vestigios biológicos recibidos en el laboratorio de patología, siguiendo PNTs:
- – Identificar las características de la pieza necrópsica señalando y registrando las alteraciones macroscópicas.
- – Someter la muestra a tratamiento de centrifugación, decantación u homogeinización, según proceda en el estudio requerido.
- – Realizar una preparación en fresco de la muestra en porta o en cámara de recuento según un método establecido que permita su estudio microscópico.
- – Realizar una extensión y posterior tinción según un método establecido de manera que permita su estudio microscópico.
- – Identificar extensiones y otros vestigios biológicos de forma indeleble registrándolos en el soporte establecido.
- – Tallar un bloque de la pieza necrópsica seleccionando zonas con alteraciones macroscópicas significativas.
- – Colocar el bloque de tallado en casetes identificándolo de forma indeleble y registrándolo en el soporte establecido.
C2: Aplicar técnicas de procesamiento de piezas necrópsicas, mediante su inclusión en medios específicos, tales como parafina u otros protocolizados.
- CE2.1 Explicar el procesamiento de los bloques tallados de piezas necrópsicas desde la recepción de los mismos hasta su inclusión en medios específicos, según protocolos.
- CE2.2 Indicar métodos de fijación y deshidratación de bloques tallados de piezas necrópsicas, siguiendo procedimientos manuales o automáticos.
- CE2.3 Describir técnicas y materiales utilizados para incluir los bloques de modo que permitan su corte en el microtomo.
- CE2.4 En un supuesto práctico de inclusión de bloques de piezas necrópsicas en parafina mediante procedimiento manual o automatizado:
- – Comprobar la codificación del bloque impresa en el recipiente contrastándola con el listado de muestras a procesar.
- – Colocar los recipientes con las muestras en cestillas de modo que queden expuestos a las sustancias con las que se van a tratar.
- – Fijar y deshidratar muestras incluidas en sus recipientes con sustancias indicadas en los protocolos.
- – Incluir las muestras fijadas y deshidratadas en parafina u otros medios según el tipo de estudio a realizar y siguiendo los pasos descritos en el procedimiento.
C3: Aplicar técnicas de corte de bloques utilizando el equipo de sección (microtomo u otros) obteniendo secciones finas del tejido que permitan su tinción y la diferenciación de estructuras celulares cuando se visualice al microcopio.
- CE3.1 Describir el procedimiento de obtención de cortes finos de tejido mediante la utilización del microtomo siguiendo un procedimiento estandarizado.
- CE3.2 Definir criterios de calidad de cortes de tejido obtenido mediante el microtomo o ultramicrotomo en función de la diferenciación celular y ultracelular visualizada.
- CE3.3 En un supuesto práctico de cortes de tejido utilizando el microtomo siguiendo PNTs de modo que se obtengan láminas finas que permitan su tinción y visualización al microscópico:
- – Colocar el bloque de parafina desbastado en el microtomo o ultramicrotomo utilizando el soporte específico.
- – Desbastar el bloque de parafina de modo que se elimine el exceso de la misma y facilite el corte del tejido incluido.
- – Enfriar el bloque de parafina mediante hielo.
- – Preparar el microtomo o ultramicrotomo seleccionando el grosor de corte con el dispositivo específico.
- – Cortar la muestra de tejido incluida en parafina con el grosor mínimo y de acuerdo al estudio solicitado.
C4: Aplicar técnicas de tinción de cortes histológicos o de citologías procedentes de vestigios biológicos siguiendo un procedimiento estandarizado dependiendo de los tejidos y pruebas solicitadas.
- CE4.1 Describir el procedimiento de montaje del corte histológico sobre el porta y de obtención de extensiones a partir de un vestigio biológico según protocolo estandarizado.
- CE4.2 Describir técnicas de tinción de cortes histológicos u otros vestigios biológicos especificando los materiales y productos empleados.
- CE4.3 Definir criterios de calidad de tinción de preparaciones histológicas y extensiones de vestigios biológicos en función de la diferenciación celular y ultracelular visualizada.
- CE4.4 Explicar técnicas especiales de diagnóstico, tales como: inmunofluorescencia, histoenzimática, inmunohistoquímica, PCR «in situ», técnicas FISH (técnicas de hibridación «in situ» con fluorescencia) y microscopía electrónica, indicando su fundamento y aplicaciones.
- CE4.5 En un supuesto práctico de tinción de cortes histológicos u otros vestigios biológicos siguiendo un procedimiento estandarizado dependiendo de los tejidos y pruebas solicitadas:
- – Incluir cortes histológicos en un baño de flotación, estirándolos para recuperar su extensión.
- – Introducir un porta en el baño de flotación para capturar el corte histológico según protocolo.
- – Introducir la preparación histológica en estufa hasta su secado.
- – Eliminar los restos de parafina con disolvente, rehidratando el corte mediante líquidos.
- – Teñir preparaciones rehidratadas de forma específica, dependiendo de los tejidos y pruebas solicitadas.
- – Teñir extensiones dependiendo del tipo de muestra y pruebas solicitadas, mediante sistemas manuales o automáticos.
- – Tratar preparaciones que requieran técnicas especiales de diagnóstico según protocolos específicos.
- – Aclarar y secar preparaciones teñidas utilizando sistemas manuales y/o automáticos.
- – Identificar los portas mediante un código.
- – Colocar portas con las preparaciones histológicas teñidas e identificadas en soportes específicos.
- – Comprobar la calidad de la preparación mediante la observación al microscopio.
C5: Analizar la calidad técnica de preparaciones histológicas y citológicas mediante observación microscópica de modo que se garantice la visualización de las estructuras tisulares y celulares, anotando las características observadas en el estudio microscópico en un informe.
- CE5.1 Indicar tipos de microscopio utilizados en el diagnóstico anatomopatológico señalando su fundamento y aplicaciones.
- CE5.2 Explicar las partes del microscopio óptico describiendo la función de cada una y realizando un esquema gráfico.
- CE5.3 Describir la estructura de la célula indicando partes y funciones.
- CE5.4 Explicar la histología básica de los tejidos corporales, relacionando las estructuras celulares con sus funciones.
- CE5.5 Indicar alteraciones patológicas que pueden encontrarse en la observación microscópica de preparaciones histológicas.
- CE5.6 Explicar componentes de los equipos de microfotografía indicando su funcionamiento así como manejo de software específicos.
- CE5.7 En un supuesto práctico de análisis de la calidad técnica de una preparación histológica o citológica mediante observación microscópica y anotando los datos observados:
- – Colocar la preparación histológica o citológica en el soporte del microscopio adaptando sus dispositivos hasta la visualización nítida de las estructuras.
- – Identificar y registrar las características técnicas de las preparaciones mediante la observación microscópica.
- – Fotografiar con el equipo de microfotografia las preparaciones histológicas y citológicas obtenidas archivándose para su registro informático.
- – Guardar las preparaciones histológicas o citológicas, una vez estudiadas, clasificándolas dentro de archivadores según protocolo.
Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajo:
C1 respecto a CE1.7; C2 respecto a CE2.4; C3 respecto a CE3.3; C4 respecto a CE4.5 y C5 respecto a CE5.7.
Otras capacidades:
- Responsabilizarse del trabajo que desarrolla y del cumplimiento de los objetivos.
- Finalizar el trabajo en los plazos establecidos.
- Emplear tiempo y esfuerzo en ampliar conocimientos e información complementaria para utilizarlos en su trabajo.
- Demostrar cordialidad, amabilidad y actitud conciliadora y sensible a los demás.
- Demostrar interés por el conocimiento amplio de la organización y sus procesos.
- Participar y colaborar activamente en el equipo de trabajo.
- Comunicarse eficazmente con las personas adecuadas en cada momento, respetando los canales establecidos en la organización.
- Respetar los procedimientos y normas internas de la empresa.
- Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.
- Transmitir información con claridad, de manera ordenada, estructurada, clara y precisa.
1. Organización, estructura y función del laboratorio de histopatología forense
- Funciones. Áreas. Organización del trabajo.
- Función del técnico especialista en laboratorios de histopatología forense.
- Materiales y equipos. Existencias. Inventarios. Almacén.
- Documentos específicos del laboratorio de histopatología forense. Cumplimentación. Custodia.
- Medios informáticos. Equipos y sistemas de gestión del laboratorio de histopatología forense (Base Asklepios u otra).
- Legislación. Requerimiento de protección de datos. Normas de seguridad en el laboratorio. Peligrosidad y riesgos específicos y accidentes. Prevención y tratamiento.
2. Técnicas de estudio de muestras en el laboratorio de histopatología forense
- Tipos de estudios necrópsicos: macroscópicos y microscópicos.
- Muestras necrópsicas y vestigios biológicos. Tipos. Técnicas de obtención de muestras. Obtención de muestras de vísceras (tanto accesibles como no accesibles) y vestigios biológicos. Asistencia al facultativo en la recogida de muestras. Recursos tecnológicos para la obtención de muestras. Agujas de punción.
- Microscopía. Estudio microscópico. Tipos de microscopio (óptico, de florescencia y electrónico): partes, mantenimiento, manejo y aplicaciones. Estructuras observadas al microscopio: células, tejidos.
- Macroscopía. Estudio macroscópico de piezas necrópsicas. Características de órganos y vísceras.
- Principales alteraciones macro y microscópicas.
3. Procesamiento de muestras y tejidos para análisis microscópico
- Fijación: fundamento y elaboración de fijadores.
- Tallado de vísceras y piezas necrópsicas.
- Inclusión: fundamentos y métodos manuales y automáticos.
- Obtención y preparación de bloques.
- Microtomía: tipos de microtomos, funcionamiento. Mantenimiento de equipos y cuchillas. Procedimiento de corte para microscopía óptica y electrónica.
- Criostato: fundamento, mantenimiento y manejo.
- Sistemas de recogida del corte (baños de flotación). Tratamiento de los cortes histológicos.
- Citología. Procesado de muestras citológicas: centrifugación, decantación y homogeneización. Técnicas de extensión. Técnicas de recuento celular.
- Coloración y tinción de preparaciones histológicas y citologías. Técnicas de tinción: rutinarias y especiales. Materiales y equipos.
- Montaje y conservación de preparaciones.
- Etiquetado y archivo de muestras.
- Técnicas especiales de diagnóstico en patología forense: inmunofluorescencia, histoenzimática, inmunohistoquímica, PCR «in situ», técnicas FISH (técnicas de hibridación «in situ» con fluorescencia) y microscopía electrónica.
- Fundamento y aplicaciones.
- Microfotografía. Características técnicas de la microfotografía. Equipo de microfotografía. Técnica de la microfotografía.
4. Normativa de riesgos laborales y medioambientales
- Aplicación según género (mujer y hombre).
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