Categorías

Denominación

Aplicaciones de cultivos celulares

Código

MF2513_3.

Descripción

Módulo de formación MF2513_3: Aplicaciones de cultivos celulares.

Aplicar técnicas en cultivos celulares especializados

Duración

60 horas.

Capacidades y criterios de evaluación

C1: Analizar técnicas de cultivo de células madre, asociándolas a aplicaciones de la medicina regenerativa.
  • CE1.1 Identificar hitos históricos relativos a la terapia celular y la medicina regenerativa, indicando sus características.
  • CE1.2 Describir tipos de células madre, enumerando sus aplicaciones.
  • CE1.3 Explicar técnicas de extracción y cultivo de células madre, precisando los materiales utilizados.
  • CE1.4 En un supuesto práctico de cultivo de células madre, controlando la viabilidad celular y la asepsia del proceso:
    • – Obtener células madre, aplicando procedimientos dependientes del tejido o material biológico de origen de las células.
    • – Cultivar células madre, considerando su origen, tipología, potencialidad y objetivo del cultivo.
    • – Procesar un cultivo de células madre, preparándolo para estudio «in vitro» de maduración celular dirigido a terapias celulares.
C2: Analizar técnicas de cultivos celulares, aplicándolas al cribado de fármacos y otros xenobióticos.
  • CE2.1 Definir dianas terapéuticas, precisando sus características, asociándolas al cribado de fármacos.
  • CE2.2 Enumerar aplicaciones de los cultivos celulares, indicado su utilización como dianas terapéuticas para el cribado de fármacos e identificando sus ventajas y limitaciones.
  • CE2.3 Describir materiales y técnicas de cultivo de distintos tipos de células, relacionándolas con su utilización como dianas terapéuticas.
  • CE2.4 Explicar ensayos de actividad de diferentes fármacos, utilizando cultivos celulares.
  • CE2.5 Describir procedimientos experimentales de citotoxicidad, utilizando cultivos celulares primarios y tumorales.
  • CE2.6 En un supuesto práctico de utilización de cultivos celulares para el cribado de fármacos, controlando la viabilidad celular y la asepsia del cultivo.
    • – Cultivar células como dianas terapéuticas, considerando su tipología.
    • – Ensayar la actividad anti-inflamatoria de un fármaco, mediante observación por microscopía óptica, estudio microbiológico, inmunológico y bioquímico del cultivo.
    • – Analizar la resistencia frente a antibióticos, aplicando técnicas de microscopía y de biología molecular.
C3: Aplicar procedimientos para la creación y mantenimiento de biobancos, garantizando su operatividad.
  • CE3.1 Identificar tipos de biobancos, estableciendo las particularidades de los bancos de células.
  • CE3.2 Reconocer normativa y recomendaciones en función del ámbito territorial, atendiendo a la creación y mantenimiento de biobancos.
  • CE3.3 Describir distintos modelos de documentos de consentimiento informado, considerando el uso y almacenamiento de muestras humanas.
  • CE3.4 Establecer medidas de seguridad para la protección de datos, utilizando la codificación y garantizando el anonimato.
  • CE3.5 En un supuesto práctico de mantenimiento de biobancos, garantizando su operatividad:
    • – Preparar modelos de documentos de consentimiento informado, asociándolos al uso y almacenamiento de muestras humanas.
    • – Elaborar las rutinas de entrada y salida de muestras del biobanco.
    • – Registrar muestras en el biobanco, utilizando el soporte y formato según aplicación informática disponible.
C4: Analizar técnicas de cultivo celular, utilizando matrices tridimensionales.
  • CE4.1 Definir cultivos celulares tridimensionales, indicando sus aplicaciones.
  • CE4.2 Describir el desarrollo de los cultivos celulares tridimensionales, relacionándolos con la ingeniería de tejidos.
  • CE4.3 Describir matrices de soporte utilizadas en los cultivos celulares tridimensionales, indicando sus características.
  • CE4.4 En un supuesto práctico de cultivos celulares, utilizando matrices tridimensionales:
    • – Seleccionar matrices, considerando soportes histotípicos y organotípicos.
    • – Realizar cultivos celulares en matrices tridimensionales, utilizando soportes histotípicos.
    • – Realizar cultivos celulares en matrices tridimensionales, utilizando soportes organotípicos.
    • – Visualizar las células contenidas en las matrices, obteniendo imágenes en tres dimensiones.
C5: Aplicar técnicas de producción de biomoléculas, asegurando la calidad de los productos generados.
  • CE5.1 Identificar clases de biomoléculas que se pueden producir, utilizando cultivos celulares.
  • CE5.2 Describir células que se utilizan en la producción industrial de biomoléculas, estableciendo diferencias.
  • CE5.3 Describir reactores empleados en la producción de biomoléculas, indicando las características de los diferentes tipos.
  • CE5.4 Identificar medios de cultivo específicos para la producción de biomoléculas, precisando métodos para su preparación.
  • CE5.5 Explicar técnicas de producción de anticuerpos monoclonales a partir de cultivo de hibridomas, precisando métodos para su purificación y cuantificación.
  • CE5.6 En un supuesto práctico de producción de biomoléculas, asegurando la calidad de los productos generados:
    • – Cultivar tipos de células, preparando los medios de cultivo específicos para la producción de biomoléculas.
    • – Producir anticuerpos monoclonales, aplicando la técnica de cultivo de hibridomas.
    • – Purificar los anticuerpos monoclonales producidos, procediendo a su cuantificación.
C6: Analizar técnicas de diagnóstico de diferentes patologías, considerando las aplicaciones de los cultivos celulares.
  • CE6.1 Identificar técnicas citogenéticas para diagnóstico de diferentes patologías, utilizando cultivos celulares.
  • CE6.2 Reconocer técnicas de inmunohistoquímica para diagnóstico de patologías, utilizando cultivos celulares.
  • CE6.3 Explicar el análisis de expresión de proteínas, aplicando técnicas de immunoblotting en cultivos celulares.
  • CE6.4 Describir el análisis de expresión de proteínas, aplicando técnicas de inmunoprecipitación en cultivos celulares
  • CE6.5 Explicar el análisis de expresión de proteínas mediante técnicas de inmunoensayos en cultivos celulares.
  • CE6.6 En un supuesto práctico de diagnóstico de patologías, utilizando cultivos celulares:
    • – Aplicar técnicas citogenéticas, realizando un cariotipo de células en cultivo.
    • – Aplicar técnicas de inmunoblotting, analizando la expresión de proteínas.
    • – Aplicar técnicas de inmunoprecipitación, analizando la expresión de proteínas.
    • – Aplicar técnicas de inmunoensayos, analizando la expresión de proteínas.
C7: Aplicar técnicas de fecundación in vitro, utilizando células de procedencia animal.
  • CE7.1 Definir fecundación in vitro, enumerando sus aplicaciones.
  • CE7.2 Describir técnicas de conservación de óvulos y espermatozoides de animales, indicando los materiales requeridos.
  • CE7.3 Explicar procedimientos para fecundación in vitro, cultivo y conservación de embriones, precisando los medios necesarios.
  • CE7.4 En un supuesto práctico de técnicas de fecundación in vitro:
    • – Conservar óvulos y espermatozoides, utilizando células de procedencia animal.
    • – Realizar fecundación in vitro, cultivando posteriormente los embriones animales.
    • – Aplicar técnicas de conservación de embriones, partiendo ce células de origen animal.
Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajo:

C1 respecto a CE1.4; C2 respecto a CE2.6; C3 respecto a CE3.5; C4 respecto a CE4.4; C5 respecto a CE5.6; C6 respecto a CE6.6 y C7 respecto a CE7.4.

Otras capacidades:

  • Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzado previamente.
  • Emplear tiempo y esfuerzo en ampliar conocimientos e información complementaria.
  • Mantener una actitud asertiva, empática y conciliadora con los demás demostrando cordialidad y amabilidad en el trato.
  • Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.
  • Demostrar creatividad en el desarrollo del trabajo que realiza.
  • Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.
  • Adoptar códigos de conducta tendentes a transmitir el contenido del principio de igualdad.

Contenidos

1. Utilización de cultivos celulares en relación con células madre, cribado de fármacos, bancos celulares y matrices tridimensionales
  • Medicina regenerativa.
  • Hitos históricos de la terapia celular y la medicina regenerativa.
  • Tipos de células madre.
  • Células madre embrionarias.
  • Células madre de sangre de cordón umbilical.
  • Células madre adultas.
  • Células madre adultas modificadas.
  • Aplicaciones de las células madre.
  • Procedimientos de extracción y cultivo de células madre.
  • Aplicaciones de los cultivos celulares como dianas terapéuticas para el cribado de fármacos.
  • Metodología para caracterización de dianas terapéuticas.
  • Ventajas y limitaciones de los cultivos celulares para el cribado de fármacos.
  • Cultivo de células como dianas terapéuticas.
  • Ensayos de citotoxicidad mediante cultivos celulares primarios y tumorales.
  • Ensayos de actividad anti-inflamatoria utilizando cultivos celulares.
  • Procedimientos para la creación y mantenimiento de bancos celulares.
  • Tipos de biobancos.
  • Normativa aplicable y recomendaciones en función del ámbito territorial referentes a creación y mantenimiento de biobancos.
  • Documentos de consentimiento informado para uso y almacenamiento de muestras humanas.
  • Medidas de seguridad para la protección de datos mediante la codificación y el anonimato.
  • Procedimientos de registro de muestras.
  • Rutinas de entrada y salida de muestras del biobanco.
  • Aplicaciones de las técnicas de cultivo en matrices tridimensionales.
  • Cultivos tridimensionales e ingeniería de tejidos.
  • Aplicaciones de los cultivos tridimensionales.
  • Matrices de soporte utilizadas en los cultivos tridimensionales.
  • Cultivos histotípicos: reagregados celulares, esponjas, esferoides, cultivos de alta densidad sobre pocillo filtro, perfusión y sobrecrecimiento de monocapa en frasco o en disco, reagregación en suspensión sobre agar o en gravedad cero real o simulada, infiltración de una matriz tridimensión como gel de colágeno.
  • Cultivos organotípicos: técnica de vidrio de reloj, Maximow, flotación, sobre rejilla.
  • Imágenes de células en tres dimensiones.
2. Utilización de cultivos celulares en relación con la producción de biomoléculas, técnicas de diagnóstico y fecundación in vitro
  • Aplicaciones de las técnicas de producción de biomoléculas.
  • Biomoléculas que se pueden producir mediante cultivos celulares.
  • Tipos de células utilizadas en la producción industrial de biomoléculas: CHO, NS0, Sp2/O, PERC6, hibridoma.
  • Reactores utilizados en la producción de biomoléculas: tipos.
  • Medios de cultivo específicos para la producción de biomoléculas.
  • Anticuerpos monoclonales generados mediante el cultivo de hibridomas.
  • Purificación y cuantificación de anticuerpos.
  • Aplicaciones de las técnicas de diagnóstico mediante el uso de cultivos celulares.
  • Tecnologías citogenéticas: aberraciones cromosómicas, obtención de cariotipos, técnicas de bandeo cromosómico, test de micronúcleos, intercambios entre cromátidas hermanas.
  • Cariotipo de células en cultivo: AA8.
  • Técnicas de inmunohistoquímica: inmunofluorescencia, hibridación in situ con fluorescencia, pintado cromosómico, técnicas citogenéticas, M-FISH, hibridación genómica comparativa.
  • Análisis de expresión de proteínas mediante técnicas de inmunoblotting, inmunoprecipitación e inmunoensayo.
  • Aplicaciones de las técnicas de fecundación «in vitro».
  • Conservación de óvulos y espermatozoides.
  • Cultivo de embriones.
  • Conservación de embriones.
  • Procedimientos de fecundación «in vitro».

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